根據調亡的生化特征的檢測方法
一、瓊脂糖凝膠電泳
1）常規的瓊脂糖凝膠電泳
方法一：
1．收集細胞（5×106）1000r/min，離心5min，去上清。
2．PBS洗一次，1000r/min，離心5min，去上清。
3．加細胞核裂解液500μl重懸細胞，50℃水浴，3～5h，不時振搖或37℃過夜。
4．加0.5ml平衡酚抽提，上下顛倒幾次混勻，6000r/min，離心5min。
5．上清移至另一Ep管，加0.5ml氯仿：異戊醇抽提，上下顛倒幾次混勻，6000r/min，離心5min。
6．上清移至另一Ep管，加50μl的3mol/L乙酸鈉和2ml預冷無水乙醇，上下顛倒幾次混勻，可見絮狀白色沉淀物。
7．置液氮5～10min，12 000r/min離心10min沉淀DNA，去上清，真空抽干或風扇下吹干殘存液體。
8．加50～100μl TE緩沖液，另加5μl RNase，37℃水浴30min。
9．取20μl加上樣緩沖液2～5μl，1％瓊脂糖凝膠電泳（電壓50V，1.5～2h），UV下觀察。
方法二：
1．離心收集細胞（5×106），PBS（無Ca2＋和Mg2＋）洗1～2次。
2．0.5ml TBE溶液重懸，37℃孵育30min。
3．1mg/ml蛋白酶K 37℃處理30min。
4．加入上樣緩沖液0.1ml。
5．25μl上樣，1.5％的瓊脂糖凝膠上電泳，2V/cm 6h。
方法三：
1．收集細胞懸液（106細胞），低速離心（1000r/min，離心5min）。
2．去上清，沉淀加0.4ml低滲緩沖液作用1h。
3．13 000r/min，離心10min，將上清轉移至另一Eppendorf管中，加等量50％異丙醇和0.5mol/L NaCl混勻，置液氮5min。
4．12 000r/min，離心10min，棄上清，沉淀真空抽干。
5．加TE 100μl，65℃加熱10min，取20μl，加1～2μl上樣緩沖液，電泳觀察。
方法四：
1．收集細胞，1000r/min離心5min，去上清。
2．用冰預冷的70％乙醇固定，可長期保存于－20℃冰箱。
3．1000r/min離心5min，去除固定液，用約0.5ml的PBS重懸細胞。
4．轉入Eppendorf管中，同法離心，去上清。
5．細胞用40μl PC緩沖液重懸，室溫30～60min。
6．1000r/min離心5min，吸上清于新的Eppendorf管中，真空濃縮15min。
7．加入0.25％ NP-40溶液3μl，1mg/ml RNase A溶液3μl，37℃，30min。
8．加入3μl蛋白酶K，37℃，30min。
9．加入12μl樣品稀釋液，含溴化乙錠的1.5％瓊脂糖電泳，觀察。
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