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QPCR實驗
發布日期:2025-12-17 16:52:32


QPCR實驗


Part.01


 染料法原理巧妙之處
在染料法中,經典染料如Sybr Green,會與DNA雙鏈中的小溝非特異結合,隨著擴增量增多,其熒光強度會等比例加劇。
問題來了,整個過程中,雖然雙鏈DNA數量以指數級增長,可熒光染料并沒有增加,但熒光強度為什么會升高呢?我們可能知道,其關鍵在于游離的染料幾乎只能發出微弱的熒光,只有結合小溝時,它們熒光強度會瞬間增強成百上千倍,這又是什么原因。
當SYBR Green I 染料在溶液中自由漂浮時,它的化學鍵可以自由旋轉、振動,整個分子也在不停地布朗運動。它吸收一個光子能量后,會從基態躍遷到激發態,這個激發態的能量需要以某種方式釋放出來,分子才能回到基態。
在游離狀態下,激發態能量很容易通過分子自身的旋轉、振動(即分子內運動)轉化為熱能并耗散掉,這個過程被稱為 “非輻射衰變”。因為能量主要通過非輻射衰變(發熱)消耗了,所以通過發射光子(即熒光)這種“輻射衰變”途徑釋放的能量就非常少,熒光信號極其微弱。
當SYBR Green I 染料插入到雙鏈DNA的小溝中時,它被緊緊地固定在了DNA雙螺旋結構里,就像三明治的夾心一樣,這種結合極大地限制了染料分子的自由旋轉和振動。此時,當染料吸收光子能量變為激發態后,由于分子運動被嚴重限制,“非輻射衰變”這個能量釋放通道就被大大削弱了,甚至幾乎被關閉了,最后只能以更高的 “輻射衰變”途徑釋放,即發射出一個熒光光子,因此,我們檢測到的熒光信號就變得非常強。



(蓉為基因)
那么,QPCR染料換成其他染料是否能行,如熒光素(FITC)、羅丹明(TRITC)、Cy系列染料?答案是不能,這些染料在游離時(本身很亮)與結合后熒光強度不會產生多大的變化,所以結合后熒光強度驟變才是巧妙之處。
Part.02
 Ct值范圍多少算合理
Ct是 Cycle Threshold Value的縮寫,中文叫 循環閾值或 閾值循環數,指qPCR反應中,體系的熒光信號強度首次達到設定的閾值時所對應的循環數,其數值大小與起始模板有直接關系(對數關系)。



從常規實驗來說,一個運行良好的qPCR實驗,其Ct值通常落在10到35之間,處女座老師更喜歡15-25之間,堪稱完美。
若低于10,意味著模板量極高,可能是加樣錯誤;若在30-35或者更高,那就是板量非常低,此時需要特別小心,因為重復樣品之間的變異可能會增大,對于絕對定量,此范圍的定量準確性會下降。
有人會問,為什么這個數值范圍是合理的,是什么原因?
當Ct值為35時,根據PCR的指數擴增(2^n)反推,起始模板量可能遠低于1個拷貝(例如,0.1個拷貝)。這意味著在反應體系中,模板DNA分子是“屈指可數”的,如此少量的模板分子在分配到不同的反應孔中時,會導致有些孔有模板,而有些卻沒有,于是重復性面臨巨大挑戰。
那么能不能更低的循環,也不行,因為通常需要大約10-15個循環,信噪比才能達到穩定檢測的要求。

Part.03
 Tm值有什么講究
實驗老法師都知道,QPCR不做溶解曲線,Ct值那將毫無意義可言,這該如何理解。
1、非特異擴增
染料法熒光PCR有個非常嚴重的Bug,染料會無差別的結合任何雙鏈DNA小溝,如非特異擴增產物,或引物二聚體等。正好,熔解曲線可以能解決這個問題,它通過逐步升溫,將產物重新熔解,結合熒光又變回了游離狀態,于是會形成一個熒光衰減曲線,單一峰象征著沒被污染。
2、Tm值含義
Tm值含義為50%的雙鏈DNA解鏈變成單鏈DNA時的溫度,該值大小與DNA分子長度、堿基構成和離子強度有關,那么這里為什么會取50%作為評測點呢?
DNA的雙鏈解鏈(變性)不是一個“全或無”的瞬間過程,而是一個隨著溫度升高而逐漸發生的協同過程。您可以把它想象成冰融化成水,有一個從固態到液態的過渡區間。50%解鏈這個點恰好是整個相變過程的中點,在數學上是S形曲線的拐點,代表了從雙鏈主導到單鏈主導的臨界狀態。
在50%解鏈點時,系統的變化最為敏感和劇烈。這一點附近的熒光變化速率是最快的(在熔解曲線的負導數圖上表現為峰值)。選擇變化率最大的點作為特征溫度,其受微小干擾(如溫度校準誤差、背景熒光波動)的影響最小,因此測量結果最精確、最穩定、可重復性最高。
舉個例子,我們定義水的沸點是100°C(在1個標準大氣壓下),此時水正在劇烈汽化,而不是定義水剛開始產生第一個氣泡的溫度(比如95°C)或完全蒸干的溫度。中點是最具代表性、最容易客觀判定的。